Skocz do zawartości

Rekomendowane odpowiedzi

Opublikowano (edytowane)

Postanowiłem trochę odkopać temat, który był kilka lat wstecz użytkowany :)

W czym rzecz:

Chciałbym prosić aby każdy chętny stworzył listę 5 ryb z grup Mbuna, Non-Mbuna,Aulonocara w jednym zestawieniu, które uważa za najpiękniejsze. Skala punktacji 1.- 5 pkt 2.- 4pkt itd. (kolejność oczywiście ma duże znaczenie)

Dzięki temu, będziemy mogli ocenić i porównać jak w ostatnich latach, zmieniło się bądz utrzymuje się upodobanie do poszczególnych gatunków z poprzednich sondaży czy też ankiet.

Głosowanie zaczynam od 11.12.2016 a skończymy 23.12.2016.

Liczę, że odpowiedzi będzie dużo, a i może to pomoże nowym użytkownikom z dobraniem obsady do wymarzonego akwarium :)

Mała aktualizacja : 15.12.2016 za namową kolegów, zmienimy trochę zasady. Od dziś wpisujemy po 5 ryb z Gatunków Mbuna, Non-Mbuna, Aulonocara oraz 3 Drapieżniki.

Aktualna Punktacja :

Mbuna:

  1. Metriaclima Fainzilberi Maison Reef - 24
  2. Labeotropheus Simoneae - 21
  3. Chindongo Saulosi - 18
  4. Labidochromis caeruleus - 15
  5. Metriaclima msobo Magunga - 15

Non-Mbuna

  1. Placidochromis phenochilus (Mdoka) - 25
  2. Copadichromis Borleyi Kadango - 22
  3. Otopharynx Tetrastigma - 17
  4. Otopharynx lithobates  - 14
  5. Placidochromis Electra - 13

Aulonocara:

  1. Aulonocara stuartgranti usisya - 10
  2. Aulonocara jacobfreibergi (Otter Pt.) - 10
  3. Aulonocara maulana -  8
  4. Aulonocara sp. Lwanda - 8
  5. Aulonocara stuartgranti Mbowe Island - 5

Drapieżniki:

  1. Buccochromis Rhoadesi - 30
  2. Dimidiochromis compressiceps - 24
  3. Nimbochromis Venustus - 18
  4. Aristochromis christyi - 24
  5. Buccochromis atritaeniatus - 12

Więc ja zacznę :

Mbuna:

  1. Chindongo Saulosi
  2. Labeotropheus Simoneae
  3. Metriaclima Fainzilberi Maison Reef
  4. Metriaclima Estherae ob-morph
  5. Labidochromis caeruleus

Non-Mbuna

  1. Placidochromis phenochilus (Mdoka)
  2. Copadichromis Borleyi Kadango -
  3. Protomelas Spilonotus Tanzania
  4. Otopharynx lithobates
  5. Copadichromis Chrysonotus

Aulonocara:

  1. Aulonocara jacobfreibergi (Otter Pt.)
  2. Aulonocara maulana
  3. Aulonocara stuartgranti (Chiwindi)
  4. Aulonocara sp. Lwanda
  5. Aulonocara stuartgranti (Ngara)

Drapieżniki:

  1. Nimbochromis venustus
  2. Aristochromis christyi
  3. Champsochromis caeruleus
Edytowane przez Merlot
Literówki i poprawione Nie Mbuna na Non-Mbuna.
  • Dziękuję 1
Opublikowano (edytowane)

To może teraz ja 

Mbuna

Labidochromis caeruleus 

Cynotilapia sp hara Gallireya Reef 

Pseudotropheus Cyaneorhabdos Maingano 

Metriaclima Msobo Magunga 

Melanochromis auratus

Non Mbuna

Copadichromis borleyi Kadango

Placidochromis phenophilus Mdoka 

Placidochromis Electra

Othoparynx lithobates

Protomelas taeniolatus

Aulonocara nie mam zdania

Predatory tu się nie znam.

Edytowane przez Bezprym
Opublikowano
15 minut temu, Bezprym napisał:

To może teraz ja

Labidochromis caeruleus 

Cynotilapia sp hara Gallireya Reef 

Pseudotropheus Cyaneorhabdos Maingano 

Dopisz jeszcze może 2 gatunki aby było tak jak w założeniu tematu 5 :)

Opublikowano (edytowane)

To może ja też zapodam swoje typy ;) 

Ogólnie znalazło by się więcej gatunków które moim zdaniem są warte uwagi,no ale coś trzeba było wybrać :) 

Mbuna-

1. Chindongo saulosi

2. Iodotropheus sprengerae

3. Pseudotropheus sp. elongatus Chewere

4. Labeotropheus trewavasae Thumbi West

5. M. Fainzilberi Maison Reef

Non-mbuna-

1.  Otopharynx lithobates (Zimbawe Rock)

2. Copadichromis borleyi Kadango

3. Placidochromis milomo

4. Placidochromis  Jalo Reef 

5. Protomelas taeniolatus red empress Namalenje

 

Aulonocara-Tu nic nie napiszę bo zupełnie nie podchodzą pod mój gust te rybki :D 

 

Drapieżniki-

1. Dimidiochromis compressiceps

2. Tyrannochromis nigriventer Makonde

3. Nimbochromis Venustus

4. Buccochromis atritaeniatus 

 

@Merlot poprawione ;) 

Edytowane przez egon44
  • Dziękuję 1
Opublikowano (edytowane)

Mbuna :

1. Labeotropheus Simoneae

2. Astatotilapia Calliptera

3. Pseudotropheus Crabro

4. Iodotropheus Sprengerae             

5. Chindongo Saulosi

 

Non-Mbuna :

1. Otopharynx Tetrastigma

2. Protomelas Spilonotus Tanzania

3. Otopharynx Lithobates

4. Lethrinops sp. "Red Cap" Itungi

5. Copadichromis geertsi Gome

 

Predatory :

1. Buccochromis Rhoadesi

2. Dimidiochromis Compressiceps

3. Nimbochromis Venustus

 

Edytowane przez MatiK
Opublikowano (edytowane)

MBUNA:
1 - Labeotropheus simoneae red
2 - Labeotropheus trewavasae Thumbi West
3 - Metriaclima Estherae ob-morph
4 - Melanochromis auratus
5 - Chindongo saulosi

NON-MBUNA
1 - Otopharynx Tetrastigma
2 - Copadichromis Borleyi
3 - Placidochromis Electra
4 - Otopharynx lithobates
5 - Protomelas Spilonotus

DRAPIEŻNIKI
1 - Buccochromis rhoadesi
2 - Nimbochromis venustus
3 - Dimidiochromis compressiceps

Edytowane przez MatiK
Opublikowano (edytowane)

Non-mbuna

1/ Placidochromis phenochilus Mdoka

2/ Taeniolethrinops praeorbitalis

3/ Protomelas sp. „steveni imperial”

4/ Copadichromis trewavasae

5/ Copadichromis parvus

Aulonocary

1/ Aulonocara sp. „stuartgranti Usisya”

2/ Aulonocara ethelwynnae

3/ Aulonocara sp. „stuartgranti Maleri”

4/ Aulonocara kandeensi

5/ Aulonocara baenschi

Drapieżniki

1/ Sciaenochromis fryeri

Mbuna

1/ Labidochromis caeruleus

2/ Metriaclima msobo Magunga

3/ Gephyrochromis lawsi

4/ Labeotropheus fuelleborni

5/ Pseudotropheus cyaneorhabdos Maingano

PS.  Wydaje mi się, że Astatotilapia Calliptera to mbuna, ale może o czymś nie wiem - jakaś zmiana nazewnictwa albo przeprowadziłeś proces adopcyjny.:)

@Merlot edytowałem z podziałem na kategorie.

Edytowane przez tom77
dodanie kategorii
  • Dziękuję 1
Opublikowano (edytowane)
8 godzin temu, tom77 napisał:

PS.  Wydaje mi się, że Astatotilapia Calliptera to mbuna, ale może o czymś nie wiem - jakaś zmiana nazewnictwa albo przeprowadziłeś proces adopcyjny.:)

Tomku w tym przypadku miałem, problem gdzie ją zestwawić i wybrałem przypisany do niej gatunek z BRKM :) będę w domu poprawie :)

Mały Edit. Przejrzałem kilka stron odnośnie Astatotilapia i w znacznej większości nie jest przypisana do grupy Mbuna

Edytowane przez Merlot
Gość
Ten temat został zamknięty. Brak możliwości dodania odpowiedzi.
  • Ostatnio przeglądający   0 użytkowników

    • Brak zarejestrowanych użytkowników przeglądających tę stronę.


  • Posty

    • Moja a502ps coś nie działa. A502e usuwała żółtawą barwę wody. Ta nie. Może sprzedawca się pomylił ?  Jak u Was ?
    • Zgadza się, ale w czasie regeneracji żywica oddaje też zgromadzonym w niej brud. Założeniem podwójnej regeneracji było to, że za pierwszym razem żywica oddaje większość brudu i podlega regeneracji, a druga tura miała skupiać się już tylko na regeneracji 🙂 Ale tak jak już pisałem żadna ze stosowanych przeze mnie metod regeneracji nie dawała jakichś spektakularnych różnic więc stosowałem je naprzemiennie. 
    • A nie zostało udowodnione kilka lat temu na forum, że kolor zupy purolajtowej bierze się z odkładającego się w złożu syfu i nijak nie ma do tego czy złoże zostało prawidłowo zregenerowane czy nie?  Fsęsie, że purolite solidnie wypłukany w czystej wodzie nie będzie puszczać koloru, ale nie poradzi nic na NO3 i odwrotnie - brudny ale prawidłowo sformatowany będzie brudzić ale działać, pomijając dodatkowy niewypłukany syf.  
    • Koledzy, mam dość obojętną wodę w kranie (nigdy nie odpowiada na zaczepki) i szkło bez piasku, z dnem strukturalnym na dnie. Szukam jakiegoś medium do trwałego podniesienia pH bez sypania sody czy innych soli, ale poza kruszonym koralowcem nic nie widzę. Kiedyś było coś takiego ale ze sklepów zniknęło, więc pewnie było po prostu słabe. Może któś, cóś?  450L, 350L wody netto, filtracja FX4 i JBL 901 z grzałką przepływową.   
    • ok, dziękuję, zamówię u tego sprzedającego.
    • Żywice do zbijania NO3 używam już od ponad 6-u lat - początkowo miałem Purolite A520E a po ok roku przesiadłem się na PA202. Regularnie co 2 tygodnie staram się robić kontrolny pomiar NO3 więc mam trochę danych statystycznych (ok 200 pomiarów) 🙂 Testy robię paskami JBL proscan, które skalibrowałem sobie kropelkami JBL, a ostatnio używam jeszcze kropelek Zooklek. PA202 pracowało u mnie prawie 5 lat, po czym wymieniłem je na nowe. W starym (mniejszym) akwarium żywicę regenerowałem jak NO3 dochodziło do 20, w obecnym nowym (większym) dopiero jak przekracza 30, przy czym w starym akwarium miałem dużo mniej ryb niż obecnie 😉 .  W obu przypadkach pierwszą regenerację robiłem po 26-28 tygodniach czyli po ok pół roku. Przy regularnych cotygodniowych serwisach zużywam i podmieniam ok 120 l wody (30%), a gdy NO3 dochodzi do 30 to robię większą podmianę (ok 50%). Gdy kolejne 2 pomiary (co 2 tygodnie) pokazują 30 to planuję regenerację i oczywiście razem z nią znaczącą podmiankę wody (nawet 70%). Czas pomiędzy kolejnymi regeneracjami stopniowo malał i początkowo było to ok 20 tygodni, aż doszedłem do 12-14 tygodni. Od marca 2024 mam nową żywicę, którą regenerowałem po raz pierwszy we wrześniu. Zaskoczeniem dla mnie było to, że już po 4 tygodniach od regeneracji N03 podskoczyło do 30. Na szczęście kilka większych podmian i NO3 spadło, ale po kolejnych 4 tygodniach znowu wskoczyło na 30 i tak się już utrzymuje - dla jasności Zoolek pokazuje pomiędzy 20 a 50. Tak szybki czas po którym żywica mi się zapchała po pierwszej regeneracji wzbudził moje zaniepokojenie i stąd moja ostatnia dociekliwość i aktywność w tym wątku 🙂  Za tydzień planuję regenerację nowym sposobem, o którym pisałem poprzednio - 30 litrów solanki ok 3% (1kg soli), powolny, pojedynczy przepływ przez blok z żywicą. Zobaczymy co z tego wyjdzie 🙂 
    • W akwarystyce problemem jest wiązanie DOC przez żywice. Przy stacji uzdatniania nie ma problemu. Producent określa parametry regeneracji w kolumnie, gdy DOC nie jest problemem. Warunki regeneracji pewnie są tak ustawione, żeby było dobrze (zużycie solanki, czas, efekt) a nie najlepiej (efekt?). Która metoda jest najskuteczniejsza (i co to znaczy)- trzeba zrobić eksperymenty. Pytanie czy bardziej wymagająca metoda regeneracji da na tyle wyraźny efekt, by było warto ją stosować. Myślę że najlepsza (efekt) będzie regeneracja w kolumnie z bardzo wolnym przepływem, solanką z ługiem sodowym (żrący!). Najlepiej na ciepło (do 60 stopni z ługiem). Napisz proszę o wynikach swoich eksperymentów
    • Ja od lat używam takiej owaty: https://allegro.pl/oferta/wloknina-poliestrowa-filtrujaca-owata-600-g-8994288263 Nie pyli i idealnie filtruje wodę - polecam.
    • Używam właśnie poliestrowej od innego dostawcy niż poprzednim razem bo tamten już nie ma jej w ofercie. Tamta poprzednia nie robiła mi takiej wody. Oczywiście nie można wykluczyć, że ubytek bakterii ze starej owaty właśnie to powoduje, mimo braku zmiany parametrów NO2, NO3, ale może też trafiłem na wyrób z innej chińskiej fabryczki gdzie proces produkcji jest trochę inny . Woda wygląda przez dwa -trzy dni jak by była lekko zabarwiona (zafarbowana) na na biało, a nie pływał w niej jakiś widoczny gołym okiem pył.  Chyba przy następnej wymianie  włożę wkłady sznurkowe i zobaczę co będzie się działo. Czy ktoś z Forumowiczów używa gotowych sznurkowych , jeśli tak to z jakim PPI bo pamiętam, że kiedyś używałem jakieś w miarę gęste i po kilku dniach się zapychały.
    • Sprzedawca nie ma tu znaczenia, należy zwracać uwagę na rodzaj włókniny. Silikonowe pylą, poliestrowe nie. https://allegro.pl/oferta/wloknina-tapicerska-poliestrowa-owata-sztywna-300g-12017517499
  • Tematy

  • Grafiki

×
×
  • Dodaj nową pozycję...

Powiadomienie o plikach cookie

By using this site, you agree to our Warunki użytkowania.